Тест НМО с ответами по теме «Основы иммуногистохимии» Интерактивный образовательный модуль (ИОМ)

1. Антитела к Цитокератину 7 с системой детекции окрашивают

1. цитоплазму клеток
2. базальную мембрану
3. ядро клеток
4. мембрану клеток
5. ядро и цитоплазму клеток.

2. Антитела к белку p40 с системой детекции окрашивают

1. ядро и цитоплазму клеток
2. базальную мембрану
3. цитоплазму клеток
4. мембрану клеток
5. ядро клеток.

3. Антитела к белку Е-кадхерину с системой детекции окрашивают

1. ядро и цитоплазму клеток
2. мембрану клеток
3. базальную мембрану
4. цитоплазму клеток
5. ядро клеток.

4. В авидин-биотиновой системе детекции современного поколения, гаптеном для третичного антитела является

1. 3-гидроксихиноксалин
2. биотин
3. 3-амино-9-этилкарбазол
4. 33’-диаминобензидин тетрагидрохлорид
5. стрептавидин.

5. В аналитический этап ИГХ-окрашивания входит

1. фиксация
2. демаскировка
3. хранение среза
4. изготовление среза
5. декальцинация.

6. В валидацию иммуногистохимических протоколов окрашивания входят следующие действия, кроме

1. используются системы детекции рекомендуемые производителем
2. перед пробным окрашиванием осуществляется подбор протокола окрашивания
3. валидация с использованием контрольных тканей
4. после пробного окрашивания при необходимости проводится коррекция протокола с документированием
5. первое пробное окрашивание с новым антителом по протоколу производителя.

7. В иммуногистохимии используют иммуноглобулины класса

1. IgD
2. IgG
3. IgE
4. IgA.

8. В иммуногистохимии первичные антитела для вторичных антител системы детекции являются

1. паратопами
2. гаптенами
3. антителами
4. антигенами.

9. В иммуногистохимии структуры клеток и межклеточного пространства являются

1. гаптенами
2. антигенами
3. паратопами
4. эпитопами
5. антителами.

10. В качестве оптимального фиксатора используют

1. 10% забуференный нейтральный формалин
2. 1% забуференный нейтральный формалин
3. 10% раствор изпропанола
4. 40% забуференный нейтральный формалин
5. 10% раствор этилового спирта.

11. В постаналитический этап ИГХ-окрашивания входит

1. интерпретация
2. декальцинация
3. фиксация
4. демаскировка
5. хранение среза.

12. В преаналитический этап ИГХ-окрашивания входит

1. окрашивание
2. фиксация
3. демаскировка
4. выбор антитела
5. визуализация.

13. В рабочие растворы первичных антител необходимо добавлять иммунохимически инетртный белок, если концентрация белка

1. более 10–100 мкг/мл
2. более 400–500 мкг/мл
3. менее 10–100 мкг/мл
4. более 200–300 мкг/мл.

14. В случае невозможности включить в позитивный контроль ткани с разной интенсивностью, стоит выбрать образец ткани

1. с выраженной интенсивностью окрашивания
2. с умеренной интенсивность окрашивания
3. с отсутствием окрашивания
4. со слабой интенсивностью окрашивания.

15. В состав авидин-биотиновых систем детекции не входит

1. раствор хромогена
2. молекула декстрана с прикрепленными антителами и ферментной меткой
3. стрептавидин конъюгированный с пероксидазой
4. вторичные анти-кроличьи антитела конъюгированные с биотином
5. вторичные анти-мышиные антитела конъюгированные с биотином.

16. В состав набора системы детекции ultraVIEW Universal DAB не входит

1. раствор сульфата меди
2. раствор перекиси водорода
3. коктейль раствора вторичных анти-кроличьих и анти-мышиных антител меченных пероксидазой хрена
4. раствор диаминобензидина тетрагидрохлорида
5. коктейль раствора вторичных анти-кроличьих и анти-мышиных антител меченных 3-гидроксихинолином.

17. Внеклеточную локализацию (окрашивание) имеет

1. белок TTF1
2. коллаген IV типа
3. белок маммаглобин
4. белок WT1
5. белок Ki67.

18. Все моноклональные антитела могут быть разведены максимально и давать более интенсивное окрашивание при

1. рН 20
2. рН 70
3. рН 60
4. рН 50
5. рН 30.

19. Генетически чужеродные вещества, способные вызывать иммунные реакции — это

1. антитела
2. молекулы
3. эпитопы
4. спирты
5. антигены.

20. Дилюенты используют для

1. отмывки после инкубации
2. депарафинизации
3. демаскировки антигенов
4. отмывки после процесса визуализации
5. приготовления рабочих растворов первичных антител.

21. Для контроля качества ИГХ-исследований используют

1. любые ткани растений
2. любые ткани животных
3. цельную кровь пациента
4. сыворотку крови
5. специальные линии клеток.

22. Для контроля качества ИГХ-исследований используют

1. цельную кровь пациента
2. контрольные ткани
3. сыворотку крови
4. любые ткани животных
5. любые ткани растений.

23. Для предотвращения снижения концентрации белка, в результате его полимеризации и адсорбции на стенках контейнера, используют

1. 001–005% бычий альбумин
2. 25–35% бычий альбумин
3. 40–50% бычий альбумин
4. 01–1% бычий альбумин
5. 15–20% бычий альбумин.

24. Для приготовления и разведения буфера не используют

1. воду высокой степени очистки
2. кипяченую воду
3. деионизированную воду
4. дистиллированную воду.

25. Изготовление библиотек предметных стекол с нанесенными контрольными тканями позволит

1. повысить ответственность гистотехника
2. повысить учет постановки ИГХ-реакций
3. сократить время работы
4. не допускать постановки ИГХ-реакции с неправильной контрольной тканью.

26. Иммуногистохимия для выявления клеточных компонентов использует

1. цитохимические реакции
2. иммунологические и гистохимические реакции
3. молекулярно-генетические методы
4. иммунологические реакции
5. гистохимические реакции.

27. Иммуногистохимия зародилась на основе концепции

1. А. Паре
2. А. Кунса
3. П. Эрлиха
4. Р. Коха
5. Н. Райхлина.

28. К антителам относят

1. фибриллярные белки
2. жирные кислоты
3. глобулярные белки класса альбуминов
4. глобулярные белки класса иммуноглобулинов
5. полисахариды.

29. К гаптенам относят

1. высокомолекулярные соединения которые самостоятельно не могут вызывать иммунного ответа лишь в соединении с другими веществами
2. низкомолекулярные соединения которые никогда не вызывают иммунного ответа
3. низкомолекулярные соединения которые самостоятельно не могут вызывать иммунного ответа лишь в соединении с другими веществами
4. высокомолекулярные соединения которые никогда не вызывают иммунного ответа.

30. К легким цепям иммуноглобулинов относятся

1. эпсилон-цепи
2. дельта-цепи
3. альфа-цепи
4. гамма-цепи
5. каппа-цепи.

31. К недостаткам моноклональных антител относят

1. меньшую воспроизводимость
2. вариабельность лот от лота
3. меньшую специфичность
4. более сложное производство
5. более частое фоновое окрашивание.

32. К хромогену в системе детекции относится

1. тирамидный остаток
2. биотин
3. 33’-диаминобензидин тетрагидрохлорид
4. стрептавидин
5. пероксидаза хрена.

33. Материалом для иммуногистохимического исследования является

1. срез ткани с парафиновых блоков
2. плазма крови
3. асцитическая жидкость
4. спинномозговая жидкость
5. каловые массы.

34. Мембранную локализацию (окрашивание) имеет

1. белок GATA3
2. белок HER2
3. белок р40
4. белок р53
5. белок TTF1.

35. На микропробирке рабочего раствора указывают

1. ФИО приготовившего разведение
2. титр антитела
3. дату разведения
4. названия антитела
5. порядковый номер.

36. На снижение времени инкубации продолжительностью до 10–30 минут не влияет

1. высокая аффинность антитела
2. высокая концентрация антитела
3. оптимальное содержание ионов растворителя
4. низкая аффинность антитела
5. оптимальное pH среды.

37. Негативные контрольные ткани позволяют оценить

1. правильность выявления эпитопа
2. специфичность
3. чувствительность протокола окрашивания
4. соблюдение техники окрашивания.

38. Преимуществом моноклональных антител от поликлональных является

1. направлены против большого количества эпитопов
2. более высокая чувствительность
3. низкая чувствительность
4. низкая специфичность
5. более высокая специфичность.

39. Преимуществом поликлональных антител от моноклональных является

1. низкая чувствительность
2. низкая специфичность
3. более высокая специфичность
4. более высокая чувствительность
5. направлены против определенного эпитопа.

40. При использовании буфера следует придерживаться следующих правил

1. для приготовления и разведения буферов следует использовать деионизированную воду
2. не использовать буферы по истечению срока
3. не разводить реагенты более того что предусматривает производитель
4. для достижения максимального эффекта смешивать разные типы буфера.

41. Причиной диффузного фонового окрашивания может быть всё, кроме

1. активности биотина
2. низкой концентрации антитела
3. неподходящего дилюента
4. активности пероксидазы
5. большой концентрации антитела.

42. Проверка реагентов должна проводиться

1. по мере потребности
2. по требованию заведующего
3. по приказу главного врача
4. по требованию старшего лаборанта (гистотехнолога)
5. по утвержденному протоколу.

43. Прямой метод визуализации подразумевает крепление ферментной метки

1. на первичное антитело
2. на полимер
3. на антиген
4. на третичное антитело
5. на вторичное антитело.

44. Связь антиген-антитело ослабляют

1. низкая температура
2. высокое значение pH
3. низкая концентрация солей
4. время инкубации
5. низкое значение pH.

45. Температура инкубации антител в практике обычно составляет

1. 45°С
2. 37°С
3. 60°С
4. 10°С
5. 20°С.

46. Титр с обозначением 1:10 соответствует

1. 10 мкл антитела 100 мкл дилюента
2. 1 мкл антитела 90 мкл дилюента
3. 10 мкл антитела 90 мкл дилюента
4. 20 мкл антитела 90 мкл дилюента
5. 2 мкл антитела 90 мкл дилюента.

47. Функцию антител описал

1. Р. Кох
2. П. Эрлих
3. А. Кунс
4. Н. Райхлин
5. А. Паре.

48. Цитоплазматическую локализацию (окрашивание) имеет

1. белок HER2
2. белок S100
3. цитокератины
4. CD30
5. белок р40.

49. Ядерно-цитоплазматическую локализацию (окрашивание) имеет

1. белок GCDFP15
2. коллаген IV типа
3. белок GATA3
4. белок СD45
5. белок S100.

50. Ядерную локализацию (окрашивание) имеет

1. белок GCDFP15
2. белок СD45
3. белок S100
4. эстроген
5. коллаген IV типа.