Тест НМО с ответами по теме «Диагностика туберкулеза: современные возможности молекулярно-генетических технологий» Интерактивный образовательный модуль (ИОМ)

1. Большинство устойчивых к изониазиду изолятов микобактерий туберкулеза имеют мутации в гене

1. katG который кодирует каталазу-пероксидазу
2. rrs который кодирует 16S рРНК
3. rpoB который кодирует β-субъединицу РНК-полимеразы
4. atpE который кодирует субьединицу АТФ синтазы.

2. Большинство устойчивых к рифампицину изолятов микобактерий туберкулеза имеют мутации в гене

1. atpE который кодирует субъединицу АТФ синтазы
2. rpoB который кодирует β-субъединицу РНК-полимеразы
3. rrs который кодирует 16S рРНК
4. katG который кодирует каталазу-пероксидазу.

3. В каком из документов метод ПЦР был определен как один из основных методов диагностики туберкулеза?

1. СанПиН 3.3686-21 "Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней"
2. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза органов дыхания 2014 год
3. Приказ Минздрава РФ от 21.03.2003 №109 «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации
4. МУ 1.3.2569-09 Организация работы лабораторий использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности.

4. В настоящее время на территории России зарегистрированы и доступны к применению молекулярно-генетические тест-системы, позволяющие выявлять мутации устойчивости микобактерий туберкулеза

1. только к рифампицину и изониазиду
2. к протионамиду/этионамиду пиразинамиду бедаквилину линезолиду
3. ко всем противотуберкулезным препаратам I и II ряда
4. к рифампицину изониазиду фторхинолонам аминогликозидам/канамицину этамбутолу.

5. В случае ингибирования ПЦР должно быть выдано заключение

1. ДНК M. tuberculosis complex не обнаружена
2. необходимо повторить исследование
3. ДНК M. tuberculosis complex обнаружена
4. обнаружена ДНК нетуберкулезных микобактерий.

6. В случае, если при микроскопии клинического образца были выявлены кислотоустойчивые микобактерии, а результат ПЦР на наличие ДНК M. tuberculosis complex оказался отрицательным, можно предположить наличие

1. гетерогенной популяции микобактерий
2. в образце ингибиторов ПЦР
3. в образце нетуберкулезных микобактерий
4. контаминации при проведении ПЦР.

7. В ходе полимеразной цепной реакции происходит

1. многократное специфическое копирование молекул белка
2. многократное копирование праймеров входящих в состав реакционной смеси
3. многократное специфическое копирование участка ДНК
4. достраивание новой цепи ДНК при участии фермента ДНК-лигазы.

8. Верными являются утверждения

1. частота возникновения мутаций может зависеть от гена в котором происходит мутация
2. формирование устойчивости микобактерий туберкулеза к рифампицину не зависит от приверженности пациента к лечению определяется только генетическими особенностями возбудителя
3. у одного пациента не могут быть выделены микобактерии туберкулеза часть из которых чувствительна к фторхинолонам а часть имеет мутации устойчивости к фторхинолонам
4. возникновение спонтанных мутаций – естественный процесс происходящий с определенной частотой.

9. Возникновение компенсаторных мутаций в ДНК микобактерий туберкулеза

1. приводит к формированию клеток микобактерий способных расти на простых питательных средах
2. негативно влияет на жизнеспособность микобактерий и приводит к их гибели
3. позволяет уменьшить негативное влияние мутации обуславливающей устойчивость в результате бактерии повышают свою жизнеспособность
4. обуславливает формирование широкой лекарственной устойчивости.

10. Высокая специфичность полимеразной цепной реакции достигается путем

1. исследования материала полученного непосредственно из очага поражения
2. подбора праймеров
3. сокращения времени проведения реакции
4. использования одноразового инструмента и посуды.

11. Генетическая информация в клетке Mycobacterium tuberculosis представлена

1. плазмидами
2. одной линейной молекулой ДНК
3. одной кольцевой молекулой ДНК
4. двумя кольцевыми молекулами ДНК.

12. Геном Mycobacterium tuberculosis штамма H37Rv впервые был расшифрован в

1. 2010 году
2. 1984 году
3. 1968 году
4. 1998 году.

13. Генотипирование клинических изолятов M. tuberculosis позволяет

1. определять лекарственную устойчивость
2. проводить диагностику туберкулеза
3. дифференцировать случаи недавнего заражения и/или реактивации туберкулезного процесса
4. проводить мониторинг эпидемиологически значимых штаммов возбудителя.

14. График флюоресценции для внутреннего контрольного образца позволяет отслеживать

1. прохождение ПЦР
2. наличие нетуберкулезных микобактерий
3. наличие ДНК микобактерий туберкулеза
4. контаминацию.

15. Если в результате выполнения исследований методом ПЦР в образце выявляется ДНК M. tuberculosis complex, но нет роста микобактерий на плотных или жидких питательных средах можно заподозрить

1. наличие в образце противотуберкулезных препаратов
2. наличие в образце нетуберкулезных микобактерий
3. наличие ошибок при проведении исследований
4. наличие в образце нежизнеспособных клеток микобактерий туберкулеза.

16. Если в результате выполнения исследований методом ПЦР в образце не выявляется ДНК M. tuberculosis complex, но есть рост микобактерий на плотных/ жидких питательных средах можно заподозрить

1. наличие в образце нежизнеспособных клеток микобактерий туберкулеза
2. наличие ошибок при проведении исследований
3. наличие в образце противотуберкулезных препаратов
4. наличие в образце нетуберкулезных микобактерий.

17. Забор клинического материала для молекулярно-генетических исследований должен производиться с использованием

1. одноразового инструмента и стерильного многоразового контейнера
2. специальных контейнеров предназначенных для молекулярно-генетических исследований
3. стерильного многоразового инструмента и посуды.

18. Использование молекулярно-генетических методов для тестирования лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза

1. по срокам исследования соответствует культуральным методам
2. позволяет не проводить культуральные методы тестирования лекарственной чувствительности которые являются дорогостоящими и длительными
3. позволяет сократить сроки обследования пациентов
4. является первоначальным этапом обследования пациентов и не исключает необходимость применения традиционных культуральных методов тестирования лекарственной чувствительности.

19. Использование полимеразной цепной реакции позволяет

1. выявлять ДНК микобактерии туберкулеза в любом клиническом материале независимо от локализации туберкулезного процесса и предполагаемого количества возбудителя
2. выявлять ДНК принадлежащую как живым так и убитым микроорганизмам
3. выявлять ДНК принадлежащую только живым микроорганизмам
4. работать с любым клиническим материалом в котором предположительно содержится максимальное количество возбудителя.

20. К быстрорастущим видам нетуберкулезных микобактерий относится

1. M. fortuitum
2. M. abcsessus
3. M. avium
4. M. intracellulare.

21. К медленнорастущим видам нетуберкулезных микобактерий относится

1. M. intracellulare
2. M. abcsessus
3. M. avium
4. M. fortuitum.

22. Материал, полученный при проведении пункционной столбиковой биопсии пристеночного образования легкого для верификации диагноза, должен быть исследован

1. комплексом методов включающих гистологические молекулярно-генетические и бактериологические
2. исключительно молекулярно-генетическими методами
3. только гистологическими методами
4. только бактериологическими методами.

23. Молекулярно-генетические исследования для контроля химиотерапии туберкулеза рекомендуется провести

1. по окончании интенсивной фазы лечения для контроля бактериовыделения
2. при снятии пациента с диспансерного учета в противотуберкулезном учреждении
3. через 2 недели после начала специфической химиотерапии
4. при наличии у больного признаков неэффективной химиотерапии и сохранении бактериовыделения по окончании интенсивной фазы химиотерапии.

24. Молекулярно-генетические технологии позволяют исследовать

1. олеиновую кислоту микобактерий
2. миколовую кислоту микобактерий
3. пептидогликаны микобактерий
4. дезоксирибонуклеиновую кислоту микобактерий.

25. Молекулярно-генетические технологии позволяют предсказывать наличие фенотипической устойчивости к препарату на основе изучения

1. определенных участков ДНК микобактерий
2. нуклеотидной последовательности праймеров
3. нуклеотидной последовательности зондов
4. последовательности ДНК плазмид микобактерий.

26. Молекулярным механизмом лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза является

1. инактивация фермента приводящего антибиотик в активную форму
2. усиленное выведение препарата из бактериальной клетки
3. стабильность мишени препарата
4. ферментативная инактивация препарата.

27. Мутации в 88 - 94 кодонах гена gyrA связаны с фенотипической устойчивостью микобактерий туберкулеза

1. к группе фторхинолонов при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности ко всем фторхинолонам применяющимся в клинике
2. только к моксифлоксацину при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности левофлоксацину
3. только к левофлоксацину при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности к моксифлоксацину
4. к офлоксацину при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности к левофлоксацину и моксифлоксацину.

28. Наличие в геноме микобактерий любой мутации в гене rpoB является маркером

1. устойчивости к этамбутолу
2. туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью
3. туберкулеза с широкой лекарственной устойчивостью
4. устойчивости к протионамиду.

29. Однократное выявление ДНК M. tuberculosis complex в клиническом материале

1. служит надежным маркером присутствия микобактерий туберкулеза у пациента благодаря высокой чувствительности метода ПЦР
2. может свидетельствовать об активной туберкулезной инфекции
3. может быть связано с хроническим течением туберкулезной инфекции
4. требует осторожной интерпретации в качестве положительного результата и согласования с другими клинико-диагностическими и анамнестическими данными.

30. Полимеразная цепная реакция в режиме реального времени позволяет

1. проводить визуализацию результатов непосредственно в ходе реакции
2. выдать заключение о наличии/отсутствии ДНК в образце уже через 30 мин после начала исследования
3. проводить реакцию без использования термоциклеров
4. проводить электрофорез в агарозном геле непосредственно во время амплификации.

31. Представители M. tuberculosis complex

1. не различаются по тропизму к хозяину
2. характеризуются низким сходством последовательности ДНК
3. характеризуются высоким сходством последовательности ДНК
4. характеризуются идентичными последовательностями 16S рРНК.

32. При исследовании гистологических препаратов возникло подозрение на туберкулезную этиологию процесса. Какие дальнейшие исследования рекомендованы?

1. необходимо провести многократную люминесцентную микроскопию гистологического препарата
2. необходимо провести исследование парафиновых блоков молекулярно-генетическими методами для подтверждения наличия в образце ДНК M. tuberculosis complex
3. необходимо провести исследование парафиновых блоков бактериологическими методами для получения культуры микобактерий
4. необходимо повторно выполнить оперативное вмешательство чтобы получить материал для молекулярно-генетических и бактериологических исследований.

33. При исследовании клинического образца молекулярно-генетическими методами мутации в гене rpoB выявлено не было, но при получении культуры микобактерий была определена ее фенотипическая резистентность к рифампицину. Каковы возможные причины расхождения результатов?

1. однородная популяция микобактерий у пациента
2. наличие мутации в ДНК которые не видит примененная молекулярно-генетическая тест система
3. ошибки при исследовании образца молекулярно-генетическим методом
4. ошибки при исследовании образца в бактериологической лаборатории.

34. При подозрении на туберкулезный плеврит исследование плевральной жидкости должно проводиться

1. только молекулярно-генетическими методами
2. только методом посева на питательные среды
3. комплексом различных методов микроскопии
4. комплексом молекулярно-генетических и бактериологических методов.

35. Приоритетным компонентом комплекса исследования у пациентов с туберкулезом является выявление мутаций, ассоциированных с лекарственной устойчивостью, в ДНК микобактерий туберкулеза к

1. фторхинолонам и аминогликозидам
2. изониазиду и этамбутолу
3. бедаквиилину и линезолиду
4. рифампицину и изониазиду.

36. Размер генома Mycobacterium tuberculosis составляет примерно

1. 1 млн пар оснований
2. 450 млн пар оснований
3. 45 млн пар оснований
4. 10 млн пар оснований.

37. Распространение микобактерий с множественной лекарственной устойчивостью на территории России, главным образом, связано с генотипом

1. Haarlem
2. Ural
3. LAM
4. Beijing.

38. Современные лабораторные этиологические исследования основываются

1. на бактериологических и на молекулярно-генетических методах
2. только на молекулярно-генетических методах
3. только на бактериологических методах
4. на фенотипических методах.

39. Согласно рекомендациям ВОЗ, определение чувствительности микобактерий туберкулеза к бедаквилину

1. возможно как молекулярно-генетическими так и фенотипическими методами
2. возможно только фенотипическими методами по причине недостаточного количества исследований подтверждающих связь между определенными мутациями и фенотипической устойчивостью
3. возможно только молекулярно- генетическими методами так как не приняты значения критических концентраций для тестирования фенотипической чувствительности к бедаквилину
4. не рекомендовано так как резистентность к этому препарату почти не встречается у клинических изолятов.

40. Согласно современной классификации, род Mycobacterium состоит из

1. около 100 видов
2. нескольких видов объединенных в группу Mycobacterium tuberculosis complex
3. одного вида Mycobacterium tuberculosis
4. более 200 видов.

41. Срок получения результата ПЦР исследования на наличие ДНК M. tuberculosis complex должен составлять

1. не более 1- 2 дней
2. не более 42 дней
3. не менее 5 рабочих дней
4. не более 2 часов.

42. У пациента подозрение на туберкулез легких, какой диагностический материал предпочтительно использовать для молекулярно-генетических исследований?

1. мокроту
2. венозную кровь
3. бронхоальвеолярную лаважную жидкость
4. мочу.

43. Условия хранения транспортировки мокроты для микробиологического и молекулярно-генетического исследований

1. при температуре от 2 до 8 градусов по Цельсию – в течение 3 суток
2. при температуре от 2 до 8 градусов по Цельсию – в течение 7 суток
3. при комнатной температуре – в течение 48 часов
4. при комнатной температуре – в течение 6 часов.

44. Ученый, разработавший метод полимеразной цепной реакции

1. Френсис Крик
2. Джеймс Уотсон
3. Кэри Муллис
4. Роберт Кох.

45. Чтобы минимизировать вероятность расхождения в результатах, полученных бактериологическими и молекулярно-генетическими методами, рекомендуется

1. исследовать клинический материал полученный из разных локализаций
2. увеличить объем исследуемого образца до 10 мл
3. провести комплексное исследование одного образца
4. исследовать не менее пяти образцов одного вида материала.