Тест НМО с ответами по теме «Полимеразная цепная реакция» Интерактивный образовательный модуль (ИОМ)

1. Амплификация – это

1. копирование ДНК
2. разрезание нити ДНК
3. усиление ферментативной активности
4. ингибирование ферментативной активности.

2. Ассиметричная ПЦР проводится

1. когда необходимо амплифицировать преимущественно обе цепи исходной ДНК
2. для уменьшения числа побочных продуктов реакции
3. для увеличения числа побочных продуктов реакции
4. когда необходимо амплифицировать преимущественно одну из цепей исходной ДНК.

3. В каких областях применяется ПЦР?

1. философия
2. фармакогенетика
3. криминалистика
4. клиническая медицина.

4. В клинической медицине ПЦР используют для

1. прочтения последовательности РНК
2. диагностики инфекционных заболеваний
3. определения уровня ЛПВП в сыворотке крови
4. определения аффинности белковых взаимодействий.

5. В состав реакционной смеси для проведения ПЦР входит

1. антитела
2. манноза
3. термостабильная ДНК-полимераза
4. глюкоза.

6. Вложенная ПЦР применяется для

1. удешевления проведения ПЦР
2. уменьшения числа побочных продуктов реакции
3. обратимости реакции
4. увеличения числа побочных продуктов реакции.

7. Во время отжига праймеров происходит

1. комплементарное взаимодействие праймера со специфичным участком
2. ингибирование ДНК-полимеразы
3. синтез комплементарной цепочки ДНК
4. белок-белковое взаимодействие между ДНК-полимеразой и другими компонентами смеси.

8. Для проведения ПЦР с «горячим стартом» используют

1. меченые нуклеотиды
2. ДНК-полимеразу блокированную антителами
3. минеральное масло
4. меченые праймеры.

9. Для чего необходимо использование ионов магния в ПРЦ-реакции?

1. поддержание активности ДНК-полимеразы
2. обеспечение ингибирования ДНК-полимеразы
3. обеспечение отжига праймеров
4. усиление взаимодействия между нуклеотидами.

10. К интеркалирующим красителям относят

1. PE
2. аминофиллин
3. SYBR Green I
4. FITC.

11. К неспецифичной детекции в ПЦР в реальном времени относят

1. свободные меченые пробы
2. праймеры-пробы
3. интеркалирующие красители
4. антитела.

12. К неспецифичным системам детекции можно отнести

1. FITC
2. SYBR Green I
3. PE
4. SYBR Gold
5. использование праймеров с флуоресцентными красителями.

13. К специфичным системам детекции относят

1. FITC
2. аминофиллин
3. свободные меченые пробы
4. SYBR Green I.

14. Какой метод можно использовать для выявления мутаций?

1. проточную цитометрию
2. динамометрию
3. ПЦР
4. ИФА.

15. Количественно оценить экспрессии гена позволяет метод

1. вложенная ПЦР
2. ассиметричная ПЦР
3. ПЦР с обратной транскрипцией
4. секвенирование.

16. Необходимыми компонентами ПЦР-смеси являются

1. ДНК-матрица
2. нуклеотиды
3. ионы магния
4. гемоглобин.

17. Области применения цифровой ПЦР

1. обнаружение химеризма
2. обнаружение специфичных антител
3. прочтение последовательности ДНК
4. обнаружение специфичного белка в пробе.

18. Отличие репликации in vivo от амплификации

1. взаимодействие in vivo с антителами
2. отсутствие ДНК-полимеразы
3. более длинные фрагменты ДНК в амплификации
4. более короткие фрагменты ДНК в амплификации.

19. ПЦР в реальном времени позволяет в отличии от ПЦР

1. определить специфичность праймеров
2. точно количественно оценить копии ДНК в образце и детектировать в реальном времени
3. обеспечить усиление комплементарного взаимодействия нуклеотидов
4. определить длину целевого фрагмента ДНК.

20. ПЦР в реальном времени – это

1. метод оценки количества глюкозы в сыворотке крови
2. чтение последовательности ДНК
3. метод определения аффинности молекул
4. метод основанный на методе полимеразной цепной реакции используется для одновременной амплификации и измерения количества данной молекулы ДНК.

21. ПЦР с использованием «горячего старта» проводят для

1. увеличения числа побочных продуктов реакции
2. наработки белкового продукта
3. уменьшения числа побочных продуктов реакции
4. определения специфичности белка.

22. ПЦР с обратной транскрипцией в клинической практике используется для

1. определения титра антител
2. поиска мутаций
3. очищения белка
4. диагностики вирусной инфекции.

23. ПЦР с обратной транскрипцией позволяет

1. обнаружить РНК-вирусы
2. диагностировать химерные транскрипты
3. оценить наличие белка в клетке
4. оценить экспрессию генов.

24. ПЦР с обратной транскрипцией – это

1. чтение обратной последовательности ДНК
2. метод амплификации специфического фрагмента рибонуклеиновой кислоты (РНК)
3. чтение прямой последовательности ДНК
4. синтез белка с целевого фрагмента ДНК.

25. Полимеразная цепная реакция – это

1. экспериментальный метод молекулярной биологии позволяющий добиться значительного увеличения малых концентраций определённых фрагментов нуклеиновой кислоты
2. определение концентрации фармакологического препарата в сыворотке крови
3. метод наработки белкового продукта в пробе
4. определение силы связывания антиген-антитело.

26. Праймеры – это

1. олигонуклеотиды длиной около 20 н.о. подобранные на специфический участок ДНК который необходимо копировать
2. клетки в которых происходит репликация
3. белки специфичные к участку ДНК
4. антитела к ДНК-полимеразе.

27. Температура для денатурации составляет

1. 40-50 градусов
2. 70-80 градусов
3. 100 градусов
4. 93-96 градусов.

28. Температура для отжига праймеров составляет

1. 30-35 градусов
2. 93-96 градусов
3. 40-75 градусов
4. 10-20 градусов.

29. Температура элонгации составляет

1. 40-50 градусов
2. 60-75 градусов
3. 10-25 градусов
4. 93-96 градусов.

30. Цифровая капельная ПЦР – это

1. чтение последовательности ДНК на чипе
2. метод ПЦР при котором реакционная смесь после добавления ДНК распыляется на множество мельчайших капель попадающих на лунки чипа
3. наработка преимущественно одноцепочечного продукта реакции
4. проведение ПЦР с использованием 4 пар праймеров.