Тест НМО с ответами по теме «Подготовка тканей к гистологическому исследованию» Интерактивный образовательный модуль (ИОМ)

1. Декальцинирующую жидкость меняют через

1. 1-2 часа
2. 24-48 часа
3. каждую неделю
4. каждые 2 недели.

2. Для качественного уплотнения материала его необходимо выдержать

1. как минимум в 2-х сменах парафина при -50ºС
2. как минимум в 2-х сменах парафина при -56ºС
3. как минимум в 3-х сменах парафина при -50ºС
4. как минимум в 3-х сменах парафина при -56ºС.

3. Завершение декальцинации определяют по

1. изменению цвета образца
2. отсутствию хруста при протыкании образца иголкой
3. повышению pH раствора до 8.0
4. помутнению декальцинирующей жидкости
5. понижению pH раствора до 5.0.

4. Из всех нижеперечисленных органов аутолиз быстрее всего начинает развиваться в

1. миокарде
2. печени
3. поджелудочной железе
4. селезенке
5. скелетных мышцах.

5. Из всех нижеперечисленных сложных фиксаторов формалин не содержит

1. жидкость Буэна
2. жидкость Карнуа
3. жидкость Орта
4. жидкость Рего
5. жидкость Ценкера.

6. Из паренхиматозного органа кусочек ткани для исследования иссекают

1. безразлично к ориентации вырезаемого кусочка
2. безразлично к строению исследуемого органа
3. перпендикулярно его поверхности с учетом строения органа
4. тангенциально к поверхности органа и с учетом его строения.

7. Иммерсионые методы фиксации

1. инактивируют ферменты за счет вытеснения воды из межклеточной жидкости
2. инактивируют ферменты за счет денатурации белков и дегидратации
3. инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в кислую сторону
4. инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в щелочную сторону.

8. К заливочным средам относятся

1. ацетон спирт пикриновая кислота
2. воск карбовакс терменвокс
3. парафин целлоидин желатин
4. спирт-эфир.

9. К простым иммерсионным фиксаторам относится

1. жидкость Буэна
2. жидкость Карнуа
3. жидкость Рего
4. формалин
5. ценкер-формол.

10. К физическим методам фиксации относят

1. применение абсолютного спирта
2. применение ацетона
3. применение низкой температуры
4. применение раствора формалина.

11. Каждый кусочек ткани маркируется

1. перед заливкой в фиксирующий раствор
2. перед наклеиванием на предметное стекло
3. перед проводкой
4. после фиксации.

12. Лучшим фиксатором для исследования липидов является

1. пикриновая кислота
2. уксусная кислота
3. хромовая кислота
4. четырехокись осмия.

13. Лучшим фиксатором для исследования митохондрий и комплекса Гольджий является

1. пикриновая кислота
2. уксусная кислота
3. хромовая кислота
4. четырехокись осмия.

14. Лучшим фиксатором для исследования срочных биопсий и гистохимических исследований является

1. ацетон
2. бутиловый спирт
3. изоамиловый спирт
4. метиловый спирт
5. этиловый спирт.

15. Лучшим фиксатором для мазков крови является

1. ацетон
2. бутиловый спирт
3. изоамиловый спирт
4. метиловый спирт
5. этиловый спирт.

16. Минимальное время промывки материала после формалиновой фиксации при условии небольшого размера кусочков составляет

1. 1 час
2. 12 часов
3. 2 часа
4. 24 часа
5. 3 часа.

17. На поперечном срезе исследуют

1. серозные оболочки
2. стенки паренхиматозных органов
3. стенки полых органов
4. эндокринные железы.

18. Нейтрализация формалина производится добавлением

1. бихромата калия
2. молибдата аммония
3. углекислого кальция
4. цитрата натрия
5. этилового спирта.

19. Объем фиксирующей жидкости должен превышать объем кусочков

1. не мене чем в 2-3 раза
2. не менее чем в 10-15 раз
3. не менее чем в 20 раз
4. не менее чем в 5 раз
5. соответствовать объему кусочков.

20. Обязательным условием для фиксации материала срочных биопсий является

1. наличие спирта в фиксирующей жидкости
2. наличие сулемы в фиксирующей жидкости
3. наличие формалина в фиксирующей жидкости
4. повышенная как минимум до 56 градусов С температура
5. пониженная как минимум до 12 градусов С температура.

21. Оптимальный объем костной ткани для успешного проведения декальцинации вне зависимости от способа (химический, электролитический) составляет

1. 05 куб. см
2. 1 куб. см
3. 2 куб. см
4. 4 куб. см.

22. Освобождение ткани от формалина после фиксации проводится с помощью

1. длительного пребывание в кислом растворе
2. промывки в 90º-96º спирте
3. промывки в проточной воде
4. промывки в смеси пикриновой кислоты и 70º-80º спирта.

23. Показанием для замены фиксирующей жидкости на новую порцию является

1. её помутнение или изменение цвета
2. изменение её вязкости
3. увеличение её объема
4. уменьшение её объема.

24. При гистохимических методах исследования физические (низкотемпературные) методы фиксации предпочтительнее, потому что они

1. менее ресурсозатратны
2. на порядки быстрее инактивируют ферменты
3. не деформируют ткани
4. не приводят к денатурации белка.

25. При исследовании патологически измененных органов обязательным условием для вырезки является

1. вырезка всего объема измененной ткани
2. вырезка максимально большого участка измененной ткани
3. вырезка минимально необходимого участка измененной ткани
4. вырезка с захватом здоровой ткани.

26. Проводка материала по спиртам возрастающей концентрации имеет целью

1. обезвоживание и обезжиривание материала
2. уплотнение и обезвоживание материала
3. уплотнение и обезжиривание материала
4. уплотнение обезвоживание и обезжиривание материала.

27. Промежуточным растворителем для парафина является

1. ацетон
2. карбовакс
3. ксилол или толуол
4. пчелиный воск
5. спирт-эфир.

28. Сильнее всего сморщивает ткани

1. фиксация ацетоном
2. фиксация бутиловым спиртом
3. фиксация метиловым спиртом
4. фиксация формалином
5. фиксация этиловым спиртом.

29. Спиртовая фиксация по сравнению с формалиновой

1. менее требовательная к размерам кусочков
2. полностью блокирует ферменты при любой концентрации этанола и при любой температуре
3. протекает быстрее
4. сильнее сморщивает ткани.

30. Толщина кусочка ткани перед заливкой в фиксирующие смеси не должны превышать

1. 05-1см
2. 15-2.0 см
3. 1-15 см
4. размеры не имеют значения.

31. Фиксирующее действие этанола реализуется за счет

1. дегидратации
2. денатурации белков
3. деполимеризации углеводов
4. обратимого обезжиривания клеток
5. функционального истощения ферментных систем.

32. Формалин (формол) является

1. 10% водным раствором формальдегида
2. 15% водным раствором формальдегида
3. 20% водным раствором формальдегида
4. 35-40% водным раствором формальдегида
5. 5% водным раствором формальдегида.

33. Формалин имеет кислое значение pH так как он

1. является альдегидом ацетилсалициловой кислоты
2. является альдегидом глутаровой кислоты
3. является альдегидом лимонной кислоты
4. является альдегидом муравьиной кислоты
5. является альдегидом уксусной кислоты.

34. Формалиновый пигмент можно удалить из ткани с помощью

1. промывки в большом количестве воды
2. промывки в ксилоле
3. промывки в спиртах возрастающей концентрации
4. промывки в спиртах понижающейся концентрации.

35. Цель фиксации

1. обезвоживание ткани
2. обезжиривание тканей
3. сохранение прижизненных структур ткани
4. уплотнение тканей.

36. Что из нижеперечисленного нельзя делать с материалом перед его погружением в фиксирующий раствор?

1. ополаскивать водой
2. ополаскивать раствором фиксатора
3. опускать в раствор фиксатора сразу же после иссечения
4. проводить его маркировку.

37. Специальность для предварительного и итогового тестирования:

1. Гистология.