Тест НМО с ответами по теме «Интерпретация результатов молекулярно-биологических исследований при диагностике туберкулеза» Интерактивный образовательный модуль (ИОМ)

1. Виды микобактерий, относящиеся к Mycobacteriumtuberculosiscomplex

1. M.africanum
2. M.bovis BCG
3. M.microti
4. M.smegmatis
5. M.terrae
6. M.tuberculosis.

2. Высокая достоверность ПЦР-анализа достигается одновременным обнаружением следующих специфичных генов Mycobacterium tuberculosis complex

1. IS6110
2. IS6850
3. regX3
4. rpoB
5. stx1.

3. Высокая специфичность метода ПЦР обусловлена

1. ДНК-полимеразой
2. РНК-полимеразой
3. дезоксирибонуклеотидтрифосфатами
4. нуклеотидной последовательностью праймеров.

4. Ген, ассоциированный с устойчивостью Mycobacterium tuberculosis к моксифлоксацину

1. eis
2. gyrA
3. katG
4. rpoB
5. rrs.

5. Генотип Mycobacteriumtuberculosis, чаще других ассоциированный с множественной и широкой лекарственной устойчивостью

1. Beijing
2. Haarlem
3. LAM
4. Ural.

6. Гибридизационный тест LPA GenoType MTBDplus можно использовать для диагностики устойчивости к

1. аминогликозидам
2. изониазиду
3. капреомицину
4. рифампицину
5. фторхинолонам
6. этамбутолу.

7. Диагностический материал, пригодный для молекулярно-генетического исследования на наличие микобактерий

1. волосы
2. кал
3. кровь
4. мокрота
5. операционный материал
6. промывные воды бронхов.

8. Для каких из следующих препаратов ежедневная доза может быть скорректирована для преодоления низкоуровневой резистентности МБТ (именно поэтому резистентность к этим препаратам стратифицируется на низко - и высокоуровневую резистентность)?

1. изониазид
2. канамицин
3. капреомицин
4. левофлоксацин
5. моксифлоксацин
6. рифампицин.

9. До начала лечения рекомендуется проводить молекулярно-генетический анализ

1. двух образцов диагностического материала
2. пяти образцов диагностического материала
3. трех образцов диагностического материала
4. четырех образцов диагностического материала.

10. Если количество МБТ в образце диагностического материала больше 50, но меньше 500 клеток в 1 мл образца, то для тестирования лекарственной устойчивости применяют

1. ДНК-стриповую технологию
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технологию
4. исследование культуры с питательной среды.

11. Если количество МБТ в образце диагностического материала меньше, чем 50 клеток на 1 мл образца, то для тестирования лекарственной устойчивости применяют

1. ДНК-стриповую технологию
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технологию
4. исследование культуры с питательной среды.

12. Идентификацию нетуберкулезных микобактерий до вида можно провести с помощью

1. ДНК-стриповой технологии (LPA)
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технологии
4. картриджной технологии
5. петлевой изотермической амплификации (LAMP).

13. К задачам генотипирования микобактерий туберкулеза относят

1. выявление возбудителя с множественной лекарственной устойчивостью
2. дифференциацию случаев недавнего заражения и/или реактивации туберкулезного процесса
3. оценку распространенности различных генотипов M. tuberculosis в популяциях
4. проверку качества мероприятий инфекционного контроля в противотуберкулезных учреждениях.

14. К методам, использующимся для генотипирования Mycobacteriumtuberculosis в клинической практике, относятся

1. ДНК-стриповая технология(LPA)
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технология
4. картриджная технология
5. петлевая изотермическая амплификация (LAMP).

15. К недостаткам метода ПЦР относятся

1. вероятность контаминации
2. высокая специфичность
3. высокая чувствительность
4. неспособность отличить живые микроорганизмы от мертвых
5. относительно высокая стоимость оборудования.

16. К причинам расхождения результатов тестирования лекарственной устойчивости МБТ культуральными и молекулярно-генетическими методами не относится

1. высокая бактериальная нагрузка
2. отсутствие всех известных мутаций устойчивости к ПТП в тест-системах
3. отсутствие фенотипического проявления мутации
4. смешанная популяция микобактерий туберкулеза.

17. Какое количество мутаций в геноме МБТ можно выявить с помощью коммерческих наборов для ПЦР в реальном времени?

1. 10
2. 15
3. 25
4. 50.

18. Какое количество мутаций, ассоциированных с лекарственной устойчивостью МБТ к изониазиду, заложено в тест-систему «ТБ-ТЕСТ» (ООО «Биочип-ИМБ»)?

1. 15
2. 21
3. 38
4. 9.

19. Какой ген резистентности не включен в гибридизационный тест LPA-SL?

1. eis
2. gyrA
3. gyrB
4. rrs
5. whiB.

20. Количество ДНК Mycobacterium tuberculosis complex в образце можно определить с помощью

1. ДНК-стриповой технологии (LPA)
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технологии
4. картриджной технологии.

21. Метод ПЦР в реальном времени (АмплиТуб) позволяет идентифицировать следующие генотипы Mycobacteriumtuberculosis

1. Beijing A0 Beijing B0
2. Beijing non-Beijing
3. H37Rv H37Ra
4. LAM Haarlem Ural.

22. Метод ПЦР в реальном времени можно использовать для диагностики устойчивости МБТ к

1. изониазиду
2. канамицину
3. капреомицину
4. рифампицину
5. фторхинолонам
6. этамбутолу.

23. Многократное увеличение копий нуклеиновых кислот получают методом

1. амплификации
2. гель-электрофореза
3. гибридизации
4. секвенирования.

24. Мутации в гене katG ассоциируются с лекарственной устойчивостью к

1. амикацину
2. изониазиду
3. рифампицину
4. фторхинолонам
5. этамбутолу.

25. На территории России доминирующим генотипом Mycobacteriumtuberculosis является

1. Beijing
2. Haarlem
3. LAM
4. Ural.

26. Организация молекулярно-генетических исследований должна обеспечивать

1. внедрение системы управления качеством во всех лабораториях вне зависимости от уровня подчиненности и вида исследований
2. наибольшую достоверность результатов исследования
3. получение результатов исследования в кратчайшие сроки
4. применение всех методов последнего поколения во всех лабораториях вне зависимости от уровня подчиненности
5. создание алгоритма этиологической диагностики в зависимости от уровня лаборатории.

27. ПЦР в режиме реального времени позволяет

1. получать результаты с использованием метода электрофореза
2. получать результаты только после проведения реакции
3. следить за накоплением продуктов по изменению окрашивания
4. следить за накоплением продуктов по усилению флуоресцентного сигнала.

28. Петлевая изотермическая амплификация (LAMP) используется для

1. видовой дифференциации в пределах Mycobacteriumtuberculosiscomplex
2. видовой идентификации нетуберкулезных микобактерий
3. выявления микобактерий туберкулезного комплекса
4. выявления мутаций лекарственной устойчивости
5. генотипирования микобактерий туберкулеза.

29. Получение положительного результата на наличие IS6110 методом ПЦР

1. не требует дополнительной дифференциации микобактерий туберкулеза от нетуберкулезных микобактерий
2. не требует проведения дальнейшей диагностики
3. требует дополнительной дифференциации микобактерий туберкулеза от нетуберкулезных микобактерий
4. требует подтверждения культуральными методами.

30. Праймеры – это

1. «строительный материал» для синтеза второй цепи ДНК
2. короткие искусственно синтезированные олигонуклеотиды
3. термостабильные ферменты
4. участки ДНК которые необходимо амплифицировать.

31. Преимуществами метода петлевой изометрической амплификации (LAMP) в сравнении с классической ПЦР являются

1. более короткие сроки исследования
2. использование флуоресцирующего красителя
3. меньшие затраты на оборудование и реагенты
4. отсутствие необходимости специализированного оборудования – термоциклера.

32. При помощи ПЦР в реальном времени можно дифференцировать

1. Mycobacterium fortuitum
2. Mycobacteriumavium
3. Mycobacteriumbovis
4. MycobacteriumbovisBCG
5. Mycobacteriumtuberculosis.

33. Причинами ложноположительных результатов исследований при использовании метода ПЦР являются

1. контаминация клинического биологического материала на преаналитическом или аналитическом этапе
2. контаминация помещений и оборудования лаборатории ампликонами
3. контаминация расходных материалов: наконечников пробирок и планшетов
4. неправильный выбор среды для транспортировки или хранения клинического материала
5. несоответствие температурного режима и времени транспортировки или хранения диагностического материала
6. топически неправильный отбор пробы.

34. Проведение ПЦР-анализа заканчивается этапом

1. амплификации ДНК-фрагментов
2. выделения ДНК
3. гибридизации ДНК-продуктов амплификации
4. детекции ДНК-продуктов амплификации.

35. Процесс присоединения праймера к одноцепочечной матрице называется

1. гибридизацией
2. денатурацией
3. отжигом
4. элонгацией.

36. Разрешающая способность 1-10 клеток в мл диагностического образца характерна для

1. ДНК-стриповой технологии(LPA)
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технологии
4. секвенирования.

37. Разрешающая способность тест-системы «ТБ-ТЕСТ» (ООО «Биочип-ИМБ») составляет

1. 1-2 клетки МБТ в 1 мл исследуемого образца
2. 1000 клеток МБТ в 1 мл исследуемого образца
3. 50 клеток МБТ в 1 мл исследуемого образца
4. 500 клеток МБТ в 1 мл исследуемого образца.

38. Роль молекулярно-генетических методов в лабораторной диагностике туберкулеза заключается в

1. возможности выбора рациональных схем лечения
2. коррекции химиотерапевтической тактики
3. микробиологическом подтверждении диагноза (дифференциальная диагностика)
4. определении эпидемической опасности пациента (бактериовыделения)
5. оценке эффективности лечения.

39. Сроки проведения ПЦР-РВ исследования для определения наличия ДНК микобактерий туберкулеза в образце составляют

1. 1 месяц
2. 1 неделя
3. 1-2 дня
4. 2 часа.

40. Технологией секвенирования, успешно применяемой в рутинных клинических исследованиях МБТ в нескольких референтных лабораториях мира, является

1. NGS (Next Generation Sequencing)
2. SMRT-секвенирование (single molecule real time sequencing)
3. нанопоровое секвенирование
4. секвенирование по Сэнгеру.

41. Технология, позволяющая непосредственно из нативной мокроты в течение 2 часов одновременно проводить выявление ДНК МБТ и с высокой достоверностью выявлять мутации, ассоциированные с устойчивостью МБТ к рифампицину

1. ДНК-стриповая технология (LPA)
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технология
4. картриджная технология
5. петлевая изотермическая амплификация (LAMP).

42. Технологиями, применяющимися для дифференциации Mycobacteriumtuberculosis и MycobacteriumbovisBCG, являются

1. ДНК-стриповая технология (LPA)
2. ПЦР в реальном времени
3. биочип технология
4. картриджная технология
5. петлевая изотермическая амплификация (LAMP).

43. Что можно заподозрить при положительном результате микроскопии и отрицательном результате ПЦР IS6110?

1. MycobacteriumbovisBCG
2. Mycobacteriumtuberculosis
3. неспецифическую микрофлору
4. нетуберкулезные микобактерии.

44. Элонгацией ДНК называется процесс

1. присоединения праймера на одноцепочечную матрицу
2. расхождения цепей двухцепочечной молекулы ДНК
3. соединения комплементарных одноцепочечных нуклеиновых кислот в одну молекулу
4. удлинения цепи ДНК при помощи ДНК-полимеразы.

45. Этап лабораторного исследования, на котором совершается более 60% ошибок

1. аналитический
2. парааналитический
3. постаналитический
4. преаналитический.