Тест НМО с ответами по теме «Подготовка тканей к гистологическому исследованию»

---

1. Декальцинирующую жидкость меняют через

1. 1-2 часа;
2. 24-48 часа;
3. каждую неделю;
4. каждые 2 недели.

2. Для качественного уплотнения материала его необходимо выдержать

1. как минимум в 2-х сменах парафина при -50ºС;
2. как минимум в 2-х сменах парафина при -56ºС;
3. как минимум в 3-х сменах парафина при -50ºС;
4. как минимум в 3-х сменах парафина при -56ºС.

3. Завершение декальцинации определяют по

1. изменению цвета образца;
2. отсутствию хруста при протыкании образца иголкой;
3. повышению pH раствора до 8.0;
4. помутнению декальцинирующей жидкости;
5. понижению pH раствора до 5.0.

4. Из всех нижеперечисленных органов аутолиз быстрее всего начинает развиваться в

1. миокарде;
2. печени;
3. поджелудочной железе;
4. селезенке;
5. скелетных мышцах.

5. Из всех нижеперечисленных сложных фиксаторов формалин не содержит

1. жидкость Буэна;
2. жидкость Карнуа;
3. жидкость Орта;
4. жидкость Рего;
5. жидкость Ценкера.

6. Из паренхиматозного органа кусочек ткани для исследования иссекают

1. безразлично к ориентации вырезаемого кусочка;
2. безразлично к строению исследуемого органа;
3. перпендикулярно его поверхности с учетом строения органа;
4.  тангенциально к поверхности органа и с учетом его строения.

7. Иммерсионые методы фиксации

1. инактивируют ферменты за счет вытеснения воды из межклеточной жидкости;
2. инактивируют ферменты за счет денатурации белков и дегидратации;
3. инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в кислую сторону;
4. инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в щелочную сторону.

8. К заливочным средам относятся

1. ацетон, спирт, пикриновая кислота;
2. воск, карбовакс, терменвокс;
3. парафин, целлоидин, желатин;
4. спирт-эфир.

9. К простым иммерсионным фиксаторам относится

1. жидкость Буэна;
2. жидкость Карнуа;
3. жидкость Рего;
4. формалин;
5. ценкер-формол.

10. К физическим методам фиксации относят

1. применение абсолютного спирта;
2. применение ацетона;
3. применение низкой температуры;
4. применение раствора формалина.

11. Каждый кусочек ткани маркируется

1. перед заливкой в фиксирующий раствор;
2. перед наклеиванием на предметное стекло;
3. перед проводкой;
4. после фиксации.

12. Лучшим фиксатором для исследования липидов является

1. пикриновая кислота;
2. уксусная кислота;
3. хромовая кислота;
4. четырехокись осмия.

13. Лучшим фиксатором для исследования митохондрий и комплекса Гольджий является

1. пикриновая кислота;
2. уксусная кислота;
3. хромовая кислота;
4. четырехокись осмия.

14. Лучшим фиксатором для исследования срочных биопсий и гистохимических исследований является

1. ацетон;
2. бутиловый спирт;
3. изоамиловый спирт;
4. метиловый спирт;
5. этиловый спирт.

15. Лучшим фиксатором для мазков крови является

1. ацетон;
2. бутиловый спирт;
3. изоамиловый спирт;
4. метиловый спирт;
5. этиловый спирт.

16. Минимальное время промывки материала после формалиновой фиксации при условии небольшого размера кусочков составляет

1. 1 час;
2. 12 часов;
3. 2 часа;
4. 24 часа;
5. 3 часа.

17. На поперечном срезе исследуют

1. серозные оболочки;
2. стенки паренхиматозных органов;
3. стенки полых органов;
4. эндокринные железы.

18. Нейтрализация формалина производится добавлением

1. бихромата калия;
2. молибдата аммония;
3. углекислого кальция;
4. цитрата натрия;
5. этилового спирта.

19. Объем фиксирующей жидкости должен превышать объем кусочков

1. не мене чем в 2-3 раза;
2. не менее чем в 10-15 раз;
3. не менее чем в 20 раз;
4. не менее чем в 5 раз;
5. соответствовать объему кусочков.

20. Обязательным условием для фиксации материала срочных биопсий является

1. наличие спирта в фиксирующей жидкости;
2. наличие сулемы в фиксирующей жидкости;
3. наличие формалина в фиксирующей жидкости;
4. повышенная как минимум до 56 градусов С температура;
5. пониженная как минимум до 12 градусов С температура.

21. Оптимальный объем костной ткани для успешного проведения декальцинации вне зависимости от способа (химический, электролитический) составляет

1. 0,5 куб. см;
2. 1 куб. см;
3. 2 куб. см;
4. 4 куб. см.

22. Освобождение ткани от формалина после фиксации проводится с помощью

1. длительного пребывание в кислом растворе;
2. промывки в 90º-96º спирте;
3. промывки в проточной воде;
4. промывки в смеси пикриновой кислоты и 70º-80º спирта.

23. Показанием для замены фиксирующей жидкости на новую порцию является

1. её помутнение или изменение цвета;
2. изменение её вязкости;
3. увеличение её объема;
4. уменьшение её объема.

24. При гистохимических методах исследования физические (низкотемпературные) методы фиксации предпочтительнее, потому что они

1. менее ресурсозатратны;
2. на порядки быстрее инактивируют ферменты;
3. не деформируют ткани;
4. не приводят к денатурации белка.

25. При исследовании патологически измененных органов обязательным условием для вырезки является

1. вырезка всего объема измененной ткани;
2. вырезка максимально большого участка измененной ткани;
3. вырезка минимально необходимого участка измененной ткани;
4. вырезка с захватом здоровой ткани.

26. Проводка материала по спиртам возрастающей концентрации имеет целью

1. обезвоживание и обезжиривание материала;
2. уплотнение и обезвоживание материала;
3. уплотнение и обезжиривание материала;
4. уплотнение, обезвоживание и обезжиривание материала.

27. Промежуточным растворителем для парафина является

1. ацетон;
2. карбовакс;
3. ксилол или толуол;
4. пчелиный воск;
5. спирт-эфир.

28. Сильнее всего сморщивает ткани

1. фиксация ацетоном;
2. фиксация бутиловым спиртом;
3. фиксация метиловым спиртом;
4. фиксация формалином;
5. фиксация этиловым спиртом.

29. Спиртовая фиксация по сравнению с формалиновой

1. менее требовательная к размерам кусочков;
2. полностью блокирует ферменты при любой концентрации этанола и при любой температуре;
3. протекает быстрее;
4. сильнее сморщивает ткани.

30. Толщина кусочка ткани перед заливкой в фиксирующие смеси не должны превышать

1. 0,5-1см;
2. 1,5-2.0 см;
3. 1-1,5 см;
4. размеры не имеют значения.

31. Фиксирующее действие этанола реализуется за счет

1. дегидратации;
2. денатурации белков;
3. деполимеризации углеводов;
4. обратимого обезжиривания клеток;
5. функционального истощения ферментных систем.

32. Формалин (формол) является

1. 10% водным раствором формальдегида;
2. 15% водным раствором формальдегида;
3. 20% водным раствором формальдегида;
4. 35-40% водным раствором формальдегида;
5. 5% водным раствором формальдегида.

33. Формалин имеет кислое значение pH так как он

1. является альдегидом ацетилсалициловой кислоты;
2. является альдегидом глутаровой кислоты;
3. является альдегидом лимонной кислоты;
4. является альдегидом муравьиной кислоты;
5. является альдегидом уксусной кислоты.

34. Формалиновый пигмент можно удалить из ткани с помощью

1. промывки в большом количестве воды;
2. промывки в ксилоле;
3. промывки в спиртах возрастающей концентрации;
4. промывки в спиртах понижающейся концентрации.

35. Цель фиксации

1. обезвоживание ткани;
2. обезжиривание тканей;
3. сохранение прижизненных структур ткани;
4. уплотнение тканей.

36. Что из нижеперечисленного нельзя делать с материалом перед его погружением в фиксирующий раствор?

1. ополаскивать водой;
2. ополаскивать раствором фиксатора;
3. опускать в раствор фиксатора сразу же после иссечения;
4. проводить его маркировку.